TUNEL细胞凋亡原位检测试剂盒（荧光及显色法）(Fluorescence and Colorimetric TUNEL Apoptosis Assay Kit)为您提供了一种高灵敏度又快速简便的细胞凋亡检测方法。对于经过固定和洗涤的细胞或组织，只要经过一步染色反应把荧光素连接到凋亡细胞中断裂的DNA的3’-OH末端，洗涤后就可以通过荧光显微镜检测到凋亡细胞；荧光素亦可被抗荧光素抗体(anti-fluorescein antibody)标记，在辣根过氧化酶底物二氨基联苯胺（DAB）的存在下，产生很强的颜色反应（呈棕色），因而在普通光学显微镜下即可观察和计数凋亡细胞。

细胞在发生凋亡时，会激活一些DNA内切酶，这些内切酶会切断核小体间的基因组DNA。细胞凋亡时抽提DNA进行电泳检测，可以发现180-200bp的DNA ladder。基因组DNA断裂时，暴露的3’-OH可以在末端脱氧核苷酸转移酶(Terminal Deoxynucleotidyl Transferase, TdT)的催化下加上荧光素(FITC)标记的dUTP(fluorescein-dUTP)，从而可以通过荧光显微镜检测；同时荧光素亦可被抗荧光素抗体(anti-fluorescein antibody)标记，在辣根过氧化酶底物二氨基联苯胺（DAB）的存在下，产生很强的颜色反应（呈棕色），因而在普通光学显微镜下即可观察和计数凋亡细胞。由于正常的或正在增殖的细胞几乎没有DNA的断裂，因而没有3'-OH形成，很少能够被标记。这就是TUNEL(TdT-mediated dUTP Nick-End Labeling)法检测细胞凋亡的原理。

本试剂盒适用于细胞样本（细胞涂片）的凋亡原位检测。

本试剂盒有如下优点：

1、 高灵敏度：可以在单细胞水平检测到细胞凋亡，同时由于凋亡早期就有DNA断裂，可以检测到早期的细胞凋亡。

2、特异性：TUNEL检测时通常更容易标记凋亡细胞，而不容易标记坏死细胞。

3、快速：仅需约3小时即可完成。

4、操作简单：使用Ready-to-Use型试剂，并配有DAB。

5、方便观察：可使用荧光显微镜观察实验结果，亦可在信号转换后使用光学显微镜观察实验结果。

多聚甲醛、甲醇、乙醇、PBS、H₂O₂ 、TritonX-100、柠檬酸钠、复染染液：苏木素或甲基绿等；盖玻片、载玻片、染色缸、染色湿盒、荧光显微镜、光学显微镜、37℃孵箱、移液器等。

A、 检测样本的预处理

TUNEL检测时样本的预处理是试验的关键所在，本说明书推荐的条件仅为普遍情况，用户需根椐自已的样

本材料及首次试验结果来调整各个条件，如处理时间、处理浓度等，来优化出适合自身样本的试验条件，从而做出客观的试验结果。

1、 对于细胞样本

a、 把准备好的细胞涂片或爬片自然晾干。

b、 把晾干的样本浸入固定液，室温（15-25℃）固定15-60min。

（固定液的配制：4%多聚甲醛溶于PH7.4的PBS中，需新鲜配制）

c、 把固定好的样本浸入PBS漂洗3次，每次5min。

d、 把c步处理好的样本浸入封闭液中，室温（15-25℃）封闭10min。

（封闭液的配制： 3%H₂O₂溶于无水甲醇）

e、 把d步处理好的样本浸入PBS漂洗3次，每次5min。

f、 把e步处理好的样本浸入通透液中，冰上（2-8℃）促渗2min。

（通透液的配制：0.1%TritonX-100溶于0.1%柠檬酸钠，需新鲜配制）

g、 然后转入B步骤标记和显色反应。

        注意事项：

a、 为防止样本脱落，请使用硅烷（Silane）处理的载玻片或采用多聚赖氨酸铺片。

b、  固定好的样本可以在-20℃的70%乙醇中放置30分钟～一晚，以改善细胞的渗透性。

c、  使用PBS漂洗细胞样本时，不要直接加在细胞样本上，以防止细胞样本的脱落。

d、 固定液、PBS、封闭液、通透液、染色缸需用户自备，请按上述方法配制    

     2、阳性对照及阴性对照的准备

TUNEL检测同时需要设阳性和阴性对照，以显示试验的客观性及准确性。因此需要按下述方法准备两个样本来制备阳性及阴性片，其后续步聚与待测样本同样进行。

        a、 阳性对照样本的准备

           样本在Triton X-100通透液处理、PBS浸洗后，再加入100μL DNase I反应液（用户自备）室温—37℃处理10 -30 min，其余步骤均相同。

（DNase I反应液的配制：10u-3000u DNase I,40mM Tris-HCl PH 7.9,10 mM NaCl, 6mM MgCl_2, 10mM CaCl₂）

      b、 阴性对照样本的准备

            在标记反应的过程中不添加TdT酶反应液，其余步骤均相同。

   B、标记和显色反应：

        1、预处理好的样本PBS漂洗2次，每次5min后，样本周围用滤纸或吸水纸吸干。

        2、配制TdT酶反应液：

  参考下表配制适当量的TdT酶反应液（根据需要按照比例放大），需充分混匀。注意：配制好的TdT酶反应液必须一次使用完毕，不能冻存。

       3、每个样本滴加50μL TdT酶反应液，加盖玻片37℃避光湿润反应60min。（阴性对照片不加TdT酶）

       4、 把第3步处理好的样本浸入PBS漂洗3次，每次5min。

       5、荧光显微镜下观察，可以使用的激发波长范围为450-500nm，发射波长范围为515-565nm(绿色荧光)。

可进一步用DAB进行染色观察

      6、anti-fluorescein antibody及DAB工作液的配制： 

 anti-fluorescein antibody工作液的配制：

参考下表配制适量的anti-fluorescein antibody工作液，需充分混匀。注意：配制好的anti-fluorescein antibody工作液必须一次使用完毕，不宜冻存。

DAB工作液的配制：

a、先把试剂盒中DAB粉末用PBS溶解配制成20×DAB（10 mg/ml），配制方法如下：

b、DAB工作液的配制：

参考下表配制适量的DAB工作液，需充分混匀。注意：配制好的DAB工作液必须一次使用完毕，不宜冻存。

     7、将第5步处理好的样本周围用滤纸或吸水纸吸干，再滴加50μL-100μL anti-fluorescein antibody工作液，加盖玻片37℃湿润避光反应30min。

     8、把第7步处理好的样本浸入PBS漂洗3次，每次5min，样本周围用滤纸或吸水纸吸干。

     9、将第8步处理好的样本滴加50μL-100μL DAB工作液，室温孵育5-30分钟或根据显色情况孵育适当时间。注意：如果显色很强可以短于5分钟即停止显色，如果显色很弱，可以适当延长显色时间，甚至显色过夜。

     10、把第9步处理好的样本浸入PBS漂洗3次，每次5min，可直接光学显微镜下观察、拍照。

      11、选做(本步骤可不做)：用苏木素染色液或甲基绿染色液进行细胞核染色。随后用PBS漂洗3次，每次5min，光学显微镜下观察、拍照。

操作注意事项：

     1、PBS清洗后，为了各种反应的有效进行，请尽量除去PBS溶液后再进行下一步反应。

      2、在载玻片上的样本上加上实验用反应液后，请盖上盖玻片或保鲜膜，或在湿盒中进行，这样可以使反应液均匀分布于样本整体，又可以防止反应液干燥造成实验失败。

      3、TdT酶反应液即用即配，短暂于冰上保存。不宜长期保存，长期保存会导酶活性的失活。

      4、如果20×DAB溶液颜色变深成为紫色，则不可使用，需重新配制。

      5、苏木素复染：将切片放入苏木素染液，染色30s-5min，蒸馏水冲洗干净后放入盐酸甲醇溶液中5s，立即用蒸馏水冲洗干净。分别用70%、85%、95%、无水乙醇浸泡5min。用二甲苯浸泡10min，更换二甲苯后再浸泡10min。晾干后在切片上加中性树胶，加盖玻片。

*TdT dilution buffer：100mM乙酸钾（pH6.8）， 1 mM 2-mercaptoethanol， 50 % Glycerol 

-20℃保存，荧光标记液和DAB需避光保存。

1、TUNEL法特异性检测细胞凋亡时产生的DNA断裂，但不会检测出射线等诱导的DNA断裂(和细胞凋亡时的断裂方式不同)。这样一方面可以把凋亡和坏死区分开，另一方面也不会把射线等诱导发生DNA断裂的非凋亡细胞判断为凋亡细胞。

2、极少数细胞凋亡时没有DNA断裂，此时不适用TUNEL法检测。在个别类型的坏死细胞中也发现TUNEL检测呈阳性。在需要严格判断细胞凋亡的情况下，最好同时检测多个凋亡指标。

3、使用前请认真阅读本说明书，提前准备好相关试剂。

4、因本试剂盒中组分均为微量，使用前请离心。

5、为避免试验误差、降低试剂的损耗，建议使用精密度高的进口微量移液枪及枪头。

6、 TdT 酶反应液最好在使用前根椐样本数量集中配制，再分别滴加于各样本片上，避免每个样本单独配制而产生的试剂损耗。

7、DAB为固体粉末，使用前加入PBS配制成20×DAB（10 mg/ml）后，按说明书显色使用。

8、为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。